本发明属于生物
技术领域：
，具体涉及南极磷虾金属螯合肽。
背景技术：
：南极磷虾通常是指南极大磷虾(euphausiasuperba)，是存在于南极海域的海洋浮游生物，隶属于节肢动物门甲壳纲磷虾目磷虾科磷虾属，形体较小，体长一般在4～6cm。南极磷虾还有丰富的蛋白质，并且以群集方式生活，密度达10000～30000尾/m3，是地球上数量最大的单种生物资源之一，也是维持南极生态系统的关键物种和高营养层级生物的重要食物来源，是地球上最大的潜在动物性蛋白资源库，被认为是21世纪重要的后备蛋白资源库。南极磷虾约含有77.9％～83.1％水分、0.4％～3.6％脂质、11.9％～15.4％蛋白质和2％甲壳质，还含有其中包含人体所需的8种必需氨基酸(eaa)和10种非必需氨基酸(neaa)，所以在医药化工及功能食品方面具有巨大的开发前景。距今为止全球已有多家生物技术公司从事磷虾高值产品研发，包括功能食品，保健品，浓缩蛋白等，形成了高值产业链。近些年来，科学家对金属螯合肽的关注越来越多，发现中国居民的钙摄入量仍然严重不足，平均每日钙摄入不到who推荐摄入量的50％。除了食物中的含钙量不足，草酸以及肠道中的磷酸盐都可能引起钙沉淀，从而影响了食物中钙的吸收。同时，对于乳糖不耐受的人群，他们的食物钙来源也受到了一定的限制。研究表明，多肽螯合钙由于其独特的螯合体制和转运机制，易于被吸收、安全无毒、价格低、可同时补充氨基酸和钙，而成为补钙首选。目前，人们已经从多种食品蛋白中分离和鉴定出了钙螯合肽，如乳清蛋白源钙螯合肽phe-asp、鳗鱼源钙螯合肽，也研究了斑点叉尾鮰鱼骨、猪骨、羊骨、鲢鱼骨等其他来源的多肽与ca2 的螯合技术等。因此，以多肽为载体制备金属-多肽可溶性复合物是改善人体矿物质元素缺乏现象的有效手段。技术实现要素：本发明的目的在于提供一种南极磷虾金属螯合肽，该南极磷虾金属螯合肽具有高钙、铁结合活性，抗氧化性能及稳定性好，有效提高铁在人体肠道中的吸收利用。本发明为实现上述目的所采取的技术方案为：一种南极磷虾金属螯合肽，其含有如下肽：ala-lys；glu-ala-arg；ala-glu-ala；val-glu-arg-gly；val-ala-ser；gly-pro-lys；ser-pro；gly-pro-lys-gly；ala-pro-arg-gly-his；gly-val-pro-gly；leu-glu-pro-gly-pro；leu-glu-lys-gly-ala；phe-pro-pro-gly-arg；gly-glu-pro-gly。本发明获得了一种南极磷虾多肽的组合物，提高了南极磷虾蛋白的利用率，具有较高的金属结合活性和抗氧化活性，对钙、铁的螯合能力强，为螯合钙、螯合铁的开发利用提供了理论基础；本发明南极磷虾金属螯合肽体外模拟胃肠消化耐受性高，体外模拟胃肠消化过程对本发明南极磷虾金属螯合肽的钙、铁螯合能力影响较小，因此，本发明南极磷虾金属螯合肽有效提高钙铁在人体肠道中的吸收率，具有良好的促吸收效果，且其钙铁螯合物在高温条件下中具有更强的稳定性；同时利用该组合肽制得的金属螯合物可有效提高抗氧化能力。因此，本发明为南极磷虾的高值化利用提供了新思路，为具有补钙和补铁作用的食品、保健品、药物的制备开发提供了新的理论依据。优选地，金属螯合肽的钙螯合率＞60％；铁螯合率＞60％。优选地，南极磷虾金属螯合肽具有较好的抗氧化活性。本发明又一目的在于提供南极磷虾金属螯合肽在制备南极磷虾肽螯合钙和螯合铁中的用途。本发明又一目的在于提供南极磷虾金属螯合肽在制备抗氧化产品中的用途。本发明又一目的在于提供南极磷虾金属螯合肽在制备食品、保健品、药物以及化妆品中的应用。优选地，食品、保健品、药物具有补钙和补铁作用。一种南极鳞虾金属螯合肽的制备方法，包括：酶解，采用胰蛋白酶酶解南极鳞虾粉得到酶解液；分离纯化，将上述酶解液经1.0kda超滤膜超滤、离子交换和凝胶过滤层析后得到南极磷虾金属螯合肽。本发明制备方法对南极磷虾酶解效果，酶解充分，水解度高，获得的南极鳞虾金属螯合肽，具有较高的抗氧化活性，对钙、铁的螯合能力强，在体外模拟胃肠消化过程对本发明南极磷虾金属螯合肽的钙、铁螯合能力影响较小，有效提高钙铁在人体肠道中的吸收率。优选地，酶解过程中，南极鳞虾脱脂粉与溶剂水的料液比为1：5～15g/ml；胰蛋白酶加入量为总溶液的2～4％。优选地，酶解过程中，酶解条件具体为温度38～42℃，酶解时间为4～6h，ph值为7～9。优选地，膜分离过程中超滤得到组分分子量＜1.0kda。优选地，离子交换层析为：经过超滤将小于1.0kda组分配置成40-60mg/ml的溶液，离心，上清过0.45μm微滤膜，滤液上样至deae-52层析柱；然后依次按照tris-hcl缓冲液、tris-hcl(含0.1mnacl)缓冲液、tris-hcl(含0.25mnacl)缓冲液、tris-hcl(含0.5mnacl)缓冲液、tris-hcl(含1mnacl)缓冲液逐级洗脱，洗脱流速为2-5ml/min，并在214nm紫外波长下收集出峰组分，测钙螯合率。优选地，凝胶过滤层析为：将deae-52层析柱所得钙螯合率最高的组分以0.3-0.6ml/min流速进行脱盐及分离，洗脱液为去离子水，并在214nm紫外波长下收集各出峰组分，测钙螯合率，钙螯合率最好组分即为南极鳞虾金属螯合肽。本发明凝胶过滤层析后进行反相高效液相色谱(hplc)纯化，将上步经sephadexg-25凝胶过滤层析后的钙螯合率最好组分利用hplc进行纯化，收集得到14个组分，经测序得到18条多肽，但是由于有部分游离氨基酸，小肽及杂质的干扰，筛选得到14条多肽(e1-e14)ala-lys(1)；glu-ala-arg(2)；ala-glu-ala(3)；val-glu-arg-gly(4)；val-ala-ser(5)；gly-pro-lys(6)；ser-pro(7)；gly-pro-lys-gly(8)；ala-pro-arg-gly-his(9)；gly-val-pro-gly(10)leu-glu-pro-gly-pro(11)；leu-glu-lys-gly-ala(12)；phe-pro-pro-gly-arg(13)；gly-glu-pro-gly(14)。本发明还公开了南极磷虾肽螯合钙的制备方法，螯合反应时间40～60min，肽与钙盐质量比为1：1～5，反应ph为7～9，温度40～60℃。本发明南极磷虾肽螯合钙在高温条件下中具有更强的稳定性。本发明还公开了南极磷虾肽螯合铁的制备方法，螯合反应时间3～6h，肽与铁盐质量比为1：5～20，反应ph为7～9，温度30～60℃。本发明南极磷虾肽螯合铁在高温条件下中具有更强的稳定性。相比于现有技术，本发明具有如下有益效果：本发明获得了一种南极磷虾多肽的组合物，提高了南极磷虾蛋白的利用率，具有较高的金属结合活性和抗氧化活性，对钙、铁的螯合能力强，为螯合钙、螯合铁的开发利用提供了理论基础；本发明南极磷虾金属螯合肽体外模拟胃肠消化耐受性高，体外模拟胃肠消化过程对本发明南极磷虾金属螯合肽的钙、铁螯合能力影响较小，因此，本发明南极磷虾金属螯合肽有效提高钙铁在人体肠道中的吸收率，具有良好的促吸收效果，且其钙铁螯合物在高温条件下中具有更强的稳定性；同时利用该组合肽制得的金属螯合物可有效提高抗氧化能力。因此，本发明为南极磷虾的高值化利用提供了新思路，为具有补钙和补铁作用的食品、保健品、药物的制备开发提供了新的理论依据。因此，本发明提供了一种南极磷虾金属螯合肽，该南极磷虾金属螯合肽具有高钙、铁结合活性，抗氧化性能及稳定性好，有效提高铁在人体肠道中的吸收利用。附图说明图1为本发明实施例1中deae-52离子交换层析结果示意图；图2为本发明实施例1中deae-52离子柱纯化组分钙螯合率测试结果图；图3为本发明实施例1中组分k1经sephadexg-25凝胶过滤层析结果；图4为本发明实施例1中组分k2经sephadexg-25凝胶过滤层析结果；图5为本发明实施例1中组分k3经sephadexg-25凝胶过滤层析结果；图6为本发明实施例1中sephadexg-25纯化后各组分钙螯合率测试结果；图7为本发明实施例1中组分k12的c18反相高效液相的谱图；图8为本发明试验例1中红外吸收光谱测试结果示意图；图9为本发明试验例1中酶解后南极磷虾金属螯合肽、纯化后南极磷虾金属螯合肽和钙螯合肽差示热量扫描分析图；图10为本发明试验例1中模拟胃液消化对螯合率影响测试结果对比示意图；图11为本发明试验例1中模拟肠液消化对螯合率影响测试结果对比示意图；图12为本发明试验例1中南极磷虾金属螯合肽zeta电位测定结果；图13为本发明试验例1中南极磷虾肽螯合钙zeta电位测定结果；图14为本发明试验例1中抗氧化活性测试结果对比示意图。具体实施方式以下结合具体实施方式和附图对本发明的技术方案作进一步详细描述：实施例1：1.1材料与试剂南极磷虾粉(脱脂)，由海力生公司提供表1实验试剂试剂生产厂家胰蛋白酶美国gibco公司tris南京建成生物工程dpph美国sigma公司氯化钠(分析纯)国药集团盐酸(分析纯)国药集团deae-52上海麦克林生化科技有限公司sephadexg-25凝胶上海源聚生物工程有限公司1.2实验仪器表2实验仪器1.3测试方法1.3.1钙螯合率测定钙含量的测定方法参照gb/t5009.92-2003食品中钙的测定中的滴定法(edta法)。其中10g/l氰化钠溶液用三乙醇胺溶液(与蒸馏水体积比1：2)替代，每次滴定前加入2～3ml。钙螯合率(％)＝m1/m0×100式中，m1为螯合钙含量，g；m0为总钙含量，g。①总钙含量的测定准确移取0.1ml反应液a于三角瓶中，加入50ml蒸馏水，加入2～3ml三乙醇胺(1：2)，摇匀，用滴定管加0.8～1ml1.25mol/l氢氧化钾溶液至ph为12～13，摇匀，加入适量钙指示剂，摇匀，立即以稀释10倍edta溶液(已标定每mledta相当于0.0456mgca)滴定，至溶液由紫红色变纯蓝色为止，记edta溶液体积v0。按下列公式可计算可得总钙含量m0：m0＝v0×0.0456/1000②螯合钙含量的测定准确移取1ml反应液a于50ml离心管中，加入20ml乙醇，温水浴中振摇1h，3500r/min离心10min，弃上清液，沉淀定容至20ml溶液，取2ml溶液edta滴定，同步骤，记edta溶液体积v1。可按下列公式计算螯合钙含量m1：m1＝v1×0.0456×10/10001.3.2水解度测定取水解蛋白液5.00ml于小烧杯中加人60ml去离子水，并磁力搅拌用精密ph计指示其ph值并用0.lmol/lnaoh滴至ph＝8.2。然后加人已和好的甲醛溶液20ml，记录将其ph值滴至9.2时所耗0.lmol/lnaoh的ml数作空白实验；水解度＝1×103mol/l×(v1-v2)/5.00(mmol/l)式中m为所用naoh溶液的摩尔浓度；而vl、v：为样品滴定,空白试验时所耗naoh的体积数(ml)。1.4南极磷虾金属螯合肽的制备方法酶解，取南极鳞虾粉按料液比1：15g/ml加入水混合均匀，用0.5mhcl调节溶液ph至8.0，然后加入胰蛋白酶(加入量为总溶液的3％)，40℃酶解4h，100℃加热灭酶10min，4000rpm离心15min后取上清液得到酶解液；该条件它的水解度为23.75±0.22％。分离纯化，将上述酶解液经超滤膜包，将小于1.0kda的组分过deae-52离子交换层析、sephadexg-25凝胶过滤层析后得到南极磷虾金属螯合肽。具体为：①deae-52离子交换层析：经过超滤将小于1.0kda组分配置成50mg/ml的样品液，并将溶液组分以12000r/min离心20min，后取其上清过0.45μm微滤膜，以充分除去不溶性杂质；取6ml左右样品并通过恒流泵恒流上样；最后依次按照tris-hcl缓冲液、tris-hcl(含0.1mnacl)缓冲液、tris-hcl(含0.25mnacl)缓冲液、tris-hcl(含0.5mnacl)缓冲液、tris-hcl(含1mnacl)缓冲液逐级洗脱。每个浓度洗脱体积为400ml，洗脱流速为3ml/min，如图1所示，洗脱出3个峰，分别命名为k1、k2、k3；并在214nm紫外波长下收集出峰组分，测钙螯合率，如图2所示(a～c间字母不同时存在显著性差异，p<0.05)，k1组分的螯合活性高于k2、k3；将所得到的单峰组分进行旋蒸浓缩后，进行下一步实验；②sephadexg-25凝胶过滤层析：将过deae-52离子柱的3个组分，以0.3ml/min流速、10min/管进行脱盐及分离，洗脱液为去离子水，并在214nm紫外波长下收集各出峰组分，如图3、图4和图5所示，从图中可以看出k1、k2、k3经sephadexg-25分别纯化得到k11、k12、k13、k21、k22五个组份。其中，k1组分被sephadexg-25凝胶过滤层析分离成3个峰，k2组分被g分离成2个峰；k3组分并没有分离成明显的峰。将上述五个组分冻干后，将其分别配制成样品溶液，测定其钙螯合率能力，如图6所示(a，b，c，p＜0.05，字母间存在显著性差异；d，f，p＜0.05，字母间存在显著性差)：k12组分的钙螯合率最好。k12组分即为南极磷虾金属螯合肽。将上步经sephadexg-25凝胶过滤层析后的组分k12利用反相高效液相色谱(hplc)进行纯化，收集得到14个组分(如图7)，经测序得到18条多肽，但是由于有部分游离氨基酸，小肽及杂质的干扰，筛选得到14条多肽(e1-e14)ala-lys(1)；glu-ala-arg(2)；ala-glu-ala(3)；val-glu-arg-gly(4)；val-ala-ser(5)；gly-pro-lys(6)；ser-pro(7)；gly-pro-lys-gly(8)；ala-pro-arg-gly-his(9)；gly-val-pro-gly(10)leu-glu-pro-gly-pro(11)；leu-glu-lys-gly-ala(12)；phe-pro-pro-gly-arg(13)；gly-glu-pro-gly(14)。实施例2：一种南极磷虾肽螯合钙的制备：s1：取实施例1制得的南极磷虾金属螯合肽，溶于水中(质量体积比为1：10g/ml)，加入氯化钙(南极磷虾金属螯合肽与氯化钙的质量比为1：5)，在60℃、ph为7、160rpm条件下反应50min，得到a溶液；s2：向上述a溶液中加入乙醇，搅拌均匀，去除未结合的钙离子，10000rpm离心5min，取出沉淀真空冷冻干燥即得南极磷虾肽螯合钙。其中，真空冷冻干燥第一阶段预冷温度为40℃，2h；第二阶段抽真空段温度为-40℃压强0pa，2h；第三阶段冻干在25℃、压强0pa的条件下进行，36h。利用实施例1所示钙螯合率的测试方法对制得的南极磷虾肽螯合钙进行测试，得到其钙螯合率为63.2±1.04％。实施例3：一种南极磷虾肽螯合铁的制备：s1：取上述南极磷虾金属螯合肽，溶于水中(质量体积比为1：10g/ml)，加入feso4·4h2o(南极磷虾金属螯合肽与feso4·4h2o的质量比为1：15)，再加入na2s2o4至终浓度为100mm，防止亚铁离子氧化，在50℃、ph为7、160rpm条件下反应5h，得到a溶液；s2：向上述a溶液中加入乙醇，搅拌均匀，去除未结合的铁离子，10000rpm离心5min，取出沉淀真空冷冻干燥即得南极磷虾肽螯合钙。其中，真空冷冻干燥第一阶段预冷温度为40℃，2h；第二阶段抽真空段温度为-40℃压强0pa，2h；第三阶段冻干在25℃、压强0pa的条件下进行，36h。铁螯合率测定铁螯合活性测定采用菲啰嗪比色法测定。铁螯合率计算公式如下：铁螯合率(％)＝m1/m0×100式中，m1为螯合物中铁的质量，mg；m0为加入反应体系中铁的总质量，mg。经上述测试可知制得的南极鳞虾肽螯合铁的铁螯合率达61.7±1.42％。试验例1：南极磷虾肽螯合钙表征1、红外光谱测定取样品5mg，与500mgkbr一起放入干燥的研钵中，在红外灯下混合研磨均匀，使其颗粒大小在25μm以下，装入压片模具，制得透明的kbr样品片。利用tensor27型红外光谱仪上进行定性分析，扫描波数范围为4000～1000cm-1，扫描分辨率为6cm-1，扫描次数为18。。对实施例1制得的南极磷虾金属螯合肽、实施例2制得的南极磷虾肽螯合钙进行上述测试，结果如图8所示。从图中分析可得，南极磷虾肽在3500～3100cm-1有较宽的吸收峰，而南极磷虾肽螯合钙则在3500～330cm-1有一个相对较窄的吸收峰，钙螯合肽中都观察到了谱带的位移、增加或消失，这表明形成了络合物，说明添加钙离子后n-h的伸缩振动发生的改变。此外1553cm-1的酰胺ⅱ带产生的峰是由碳氨(c-n)伸缩振动和氮氢(n-h)弯曲振动引起的，当生成螯合物后波动消失，而南极鳞虾肽中的羧基(-coo-)在1296cm-1出现的吸收峰在钙螯合肽中消失了，故而可以猜测羰基氧原子和氨基氮原子是钙离子螯合的主要作用位点。2、差示热量扫描取8mg样品，利用差示热量扫描仪记录的dsc曲线，对胶原低聚肽及其螯合钙进行分析。具体参数：升温速度5℃/min，温度范围0～150℃，n2流速40ml/min。对实施例1制得的酶解后的南极磷虾金属螯合肽和纯化后的南极磷虾金属螯合肽、实施例2制得的南极磷虾肽螯合钙进行上述测试，结果如图9所示(图中[4]为实施例1制得的酶解后的南极磷虾金属螯合肽、[5]为纯化后的南极磷虾金属螯合肽、[6]为实施例2制得的南极磷虾肽螯合钙)。从图中分析可得酶解后的南极磷虾金属螯合肽在102.7℃出现热吸收峰，这是南极磷虾金属螯合肽的热变性过程。纯化后的南极磷虾金属螯合肽在117.3℃出现一个热吸收峰，纯化后的南极磷虾肽螯合钙在119.8℃出现一个热吸收峰，通过比较发现热吸收峰的温度逐渐升高，这可能是纯化后的南极磷虾金属螯合肽与钙离子的结合，改变了原有的自然构象，生成一种更加稳定的新物质。这说明南极磷虾肽与钙确实发生螯合反应，具有更强的稳定性。3、体外模拟胃肠道稳定性试验模拟胃消化液及肠消化液配制方法：将40mg胃蛋白酶溶解于1ml0.1nhcl中，配制模拟胃消化液；将120mg牛胆酸钠和20mg胰蛋白酶溶解于10ml0.1m的nahco3溶液中，配制模拟肠消化液；模拟胃肠消化：配制1mg/ml的南极磷虾肽金属螯合肽水溶液，37℃孵育30min，用1mhcl调节ph至2.0，加入模拟胃消化液(胃蛋白酶：南极磷虾肽＝1：100wt/wt)，140rpm搅拌，模拟胃消化过程，模拟胃消化120min后用0.1mnaoh溶液调节ph至8，加入模拟肠消化液(胰蛋白酶：南极磷虾金属螯合肽＝1：100wt/wt)，140rpm搅拌，持续肠液消化120min。每隔15min测定钙螯合率。测试结果如图10和图11所示。从图10中分析可知，在加入模拟胃液后，样品螯合率下降到43.49％，并于45min内迅速降至14.66％(p＜0.05)；当消化时间从30min延长至120min时，螯合率的下降速度逐渐变缓，最终降至7.64％，此时ca2 主要以游离的形式存在。这是可能是由于胃部ph值较低，h 含量极高，高浓度的h 与ca2 争夺了明胶多肽上绝大部分的结合位点，并破坏了南极磷虾螯合钙的结构，导致了螯合率的迅速下降。由图11可知，在模拟肠道消化过程中，样品的螯合率回升(p＜0.05)。在120～180min内，螯合率从10.15％增加到了34.62％；随着时间的进一步延长，螯合率的增长速度变缓，最终模拟肠液中南极磷虾钙肽螯合物的螯合率增加到38.75％，这是由于进入肠道后ph值升高，外界环境中h 的浓度逐渐降低，ca2 和多肽的螯合能力增强，最终导致钙肽螯合率升高。4、zeta电位测定样品处理：将样品配制成质量浓度0.2mg/ml，总体积15ml，在zeta电位分析仪上进行电位滴定。对实施例1制得的南极磷虾金属螯合肽、实施例2制得的南极磷虾肽螯合钙进行上述测试，结果如图12和图13所示。从图来看，结合zeta电位分析曲线可得金属螯合肽的等电点为3.664，溶于水时测得ph为3.0，此时电位为0.04，接近于零，粒子间静电斥力很小，稳定性很差。钙螯合肽等电点为3.433，而螯合物在水溶液状态下ph为6.25，对应电位约为-5.51mv，静电斥力较大，颗粒稳定性好。说明南极磷虾与钙螯合后ph提高，带电性减弱，趋向中性分子。5、抗氧化活性测定分别采用dpph自由基清除活性测定法评价制备的南极磷虾酶解液(实施例1)、南极磷虾肽螯合钙(实施例2)和南极磷虾肽螯合铁(实施例3)的抗氧化活性，结果如图14所示。从图中分析可知，南极磷虾肽螯合钙的dpph的清除率为87.6，南极磷虾肽螯合铁自由基清除率为84.1％，均高于南极磷虾酶解物的70.3％；表明金属螯合有效提高了南极磷虾多肽的抗氧化活力。上述实施例中的常规技术为本领域技术人员所知晓的现有技术，故在此不再详细赘述。以上所述，仅为本发明的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本
技术领域：
的技术人员在本发明揭露的技术范围内，可轻易想到变化或替换，都应涵盖在本发明的保护范围之内。因此，本发明的保护范围应以所述权利要求的保护范围为准。当前第1页1 2 3
技术特征：1.一种南极磷虾金属螯合肽，其含有如下肽：ala-lys；glu-ala-arg；ala-glu-ala；val-glu-arg-gly；val-ala-ser；gly-pro-lys；ser-pro；gly-pro-lys-gly；ala-pro-arg-gly-his；gly-val-pro-gly；leu-glu-pro-gly-pro；leu-glu-lys-gly-ala；phe-pro-pro-gly-arg；gly-glu-pro-gly。
2.根据权利要求1所述的一种南极磷虾金属螯合肽，其特征在于：所述南极磷虾金属螯合肽的钙螯合率＞60％；铁螯合率＞60％。
3.根据权利要求1所述的一种南极磷虾金属螯合肽，其特征在于：所述南极磷虾金属螯合肽具有较好的抗氧化活性。
4.权利要求1所述的南极磷虾金属螯合肽在制备南极磷虾肽螯合钙和螯合铁中的用途。
5.权利要求1所述的南极磷虾金属螯合肽在制备抗氧化产品中的用途。
6.权利要求1所述的南极磷虾金属螯合肽在制备食品、保健品、药物以及化妆品中的应用，所述食品、保健品、药物具有补钙和补铁作用。
7.南极磷虾肽螯合钙的制备方法，螯合反应时间40～60min，肽与钙盐质量比为1：1～5，反应ph为7～9，温度40～60℃；本发明南极磷虾肽螯合钙在高温条件下中具有更强的稳定性。
8.南极磷虾肽螯合铁的制备方法，螯合反应时间3～6h，肽与铁盐质量比为1：5～20，反应ph为7～9，温度30～60℃；本发明南极磷虾肽螯合铁在高温条件下中具有更强的稳定性。
技术总结本发明公开了一种南极磷虾金属螯合肽，涉及生物技术领域，其含有如下肽：Ala‑Lys；Glu‑Ala‑Arg；Ala‑Glu‑Ala；Val‑Glu‑Arg‑Gly；Val‑Ala‑Ser；Gly‑Pro‑Lys；Ser‑Pro；Gly‑Pro‑Lys‑Gly；Ala‑Pro‑Arg‑Gly‑His；Gly‑Val‑Pro‑Gly；Leu‑Glu‑Pro‑Gly‑Pro；Leu‑Glu‑Lys‑Gly‑Ala；Phe‑Pro‑Pro‑Gly‑Arg；Gly‑Glu‑Pro‑Gly。本发明金属螯合肽对钙、铁的螯合能力强，抗氧化性能及稳定性高，可有效提高铁在人体肠道中的吸收利用。
技术研发人员：王斌;迟长凤;张伦;赵玉勤
受保护的技术使用者：浙江海洋大学
技术研发日：2020.11.06
技术公布日：2021.03.12
